Методы и способы борьбы с вредителями и болезнями растений

Как бороться с вредителями и болезнями растений.

Методы и способы борьбы с вредителями и болезнями растений

Защита растений от вредителей и болезней в целом, в том числе и защита насаждений городов и населённых мест, с каждым годом совершенствуется, что позволяет значительно снизить ущерб, причиняемый вредными организмами.

Методы защиты растений основываются на современных достижениях науки.

Выделяют следующие методы — агротехнический (лесохозяйственный), физико—механический, биологический и химический.

Все эти методы практически применяются не изолированно, а в виде системы мероприятий, которые представляют собой комплексное использование нескольких методов, что даёт наибольший эффект в борьбе с вредителями и болезнями.

В каждой природно—экономической зоне система мероприятий различна в соответствии с местными условиями.

Применение системы мероприятий имеет целью повысить устойчивость насаждений путём создания наиболее благоприятных условий роста, введения устойчивых пород, создания благоприятных условий для обитания и размножения полезных птиц, насекомых и других животных, уничтожения вредных организмов с помощью химического и других методов борьбы.

Необходимым условием успешного применения систем мероприятий по борьбе с вредителями и болезнями являются обследования насаждений и сигнализация о появлении вредителей и болезней.

По данным обследований насаждений определяется назначение соответствующих мер борьбы с вредными организмами.

Агротехнический метод.

Агротехническому методу (или лесохозяйственному для условий лесопаркового хозяйства) в системе мероприятий по борьбе с вредителями и болезнями зелёных насаждений принадлежит ведущее место. Этот метод везде доступен для применения и весьма эффективен. Агротехнические мероприятия создают растениям благоприятные условия для роста и повышают их устойчивость к поражению вредными организмами.

Важнейшими из агротехнических мер являются следующие.

Чередование культур.

Чередование культур

Ограничивает численность вредителей и болезней, особенно специализированных, поражающих определённые культуры. Большое значение чередование культур имеет в питомниках и цветоводческих хозяйствах. Чтобы избежать потерь, не следует ежегодно высаживать цветочные и другие растения на одних и тех же участках.

Использование устойчивых видов и сортов растений.

Использование устойчивых видов и сортов растений

Для каждой природно—климатической зоны могут быть подобраны декоративные древесно—кустарниковые и цветочные растения, устойчивые к комплексу наиболее опасных для данной зоны вредителей и болезней. Например, разной устойчивостью к вредителям обладают рано или поздно распускающиеся весной формы дуба. Сравнительно слабо повреждаются вредителями клёны, хотя они часто страдают от грибных болезней, среднеазиатские виды ильмовых устойчивы к голландской болезни.

Устойчивость насаждений достигается не только подбором устойчивых видов и сортов, но также их размещением и сочетанием. Не рекомендуется сажать вместе породы, являющиеся взаимными передатчиками заболеваний, например тополь и сосну. Устойчивость насаждений достигается также равномерной сомкнутостью крон, созданием плотных опушек из кустарников. Смешанные насаждения, состоящие из нескольких пород, всегда устойчивее чистых. Это объясняется тем, что в смешанных насаждениях всегда больше полезных птиц и насекомых и условия для распространения многих болезней растений ограничены.

Отбор посевного и посадочного материала.

Отбор посевного и посадочного материала

С семенами, клубнями, луковицами, саженцами и черенками в почву могут быть занесены различные вредители (например, луковичный клещ) и возбудители многих грибных заболеваний (фузариоз сеянцев хвойных и лиственных пород, увядание цветочных растений и др.). При посадке заражённых саженцев и деревьев в сады, парки и городские насаждения могут быть занесены различные виды вредителей и болезней, которые в новых условиях будут продолжать повреждать и заражать другие растения. Поэтому весь посевной и посадочный материал необходимо тщательно отбирать, а при необходимости обеззараживать.

Обработка и удобрение почвы.

Обработка и удобрение почвы

В почве обитают многие вредные насекомые и возбудители болезней растений. У некоторых насекомых (медведка) весь жизненный цикл проходит в почве, где они питаются подземными частями растений. Другие вредные насекомые бывают связаны с почвой только в определённые фазы своего развития. Ряд видов насекомых—вредителей откладывает яйца в почву (щелкуны, чернотёлки, пластинчатоусые), и их личинки поедают семена или объедают корни растений. Многие насекомые уходят в почву на окукливание или зимовку.

Правильная обработка почвы вызывает гибель многих вредителей и возбудителей болезней растений, находящихся в почве, на её поверхности или на растительных остатках. При глубокой обработке почвы насекомые и возбудители болезней, находящиеся в поверхностных слоях почвы, запахиваются в более глубокие слои, а насекомые, находящиеся в нижних слоях, наоборот, выпахиваются на поверхность почвы, где погибают. Рыхление почвы создает благоприятные условия для обитания в ней хищных насекомых, уничтожающих вредителей. При обработке почвы разрушаются норы мышей.

Удобрение почвы и подкормка растений ускоряют рост и повышают их устойчивость против вредителей и болезней. Некоторые удобрения непосредственно действуют на вредителей, например, суперфосфат вызывает гибель слизней.

Известкование кислых почв создает неблагоприятные условия для развития личинок щелкунов и многих возбудителей болезней растений.

Уничтожение сорняков.

Уничтожение сорняков

Сорная растительность является очагом размножения вредных организмов. Сорняки служат для них местом обитания и источником питания. Паутинный клещ, крестоцветные блошки, хризантемная нематода и другие вредители питаются и размножаются на сорных растениях, а затем переселяются на различные культуры и повреждают их. Некоторые сорняки являются промежуточными хозяевами для возбудителей некоторых болезней. Так, ржавчина сосны паразитирует на осоте, мать—и—мачехе. Поэтому рекомендуется систематически и тщательно уничтожать сорняки и содержать в чистоте посадки.

Санитарно—профилактические мероприятия.

Санитарно—профилактические мероприятия

Направлены на устранение источников инфекции и ликвидацию очагов развития вредителей и болезней. С этой целью в садах и парках убирают опавшие листья, хвою, шишки, плоды, мёртвые ветви и погибшие растения. Проводится обрезка больных и засохших ветвей и побегов, уход за кронами, выборка свежезаселенных стволовыми вредителями деревьев, окорка и корчёвка пней, удаление плодовых тел грибов, лечение ран и пломбировка дупел.

Обрезка ветвей обычно проводится до начала вегетации растений. Если обрезка проводится в период вегетации, то места срезки дезинфицируют и замазывают садовыми замазками. Выборка заселенных стволовыми вредителями деревьев обычно проводится в два срока — весной до начала июня и в осенне—зимний период.

Свежезаселенные деревья срубают, окоривают и удаляют из насаждений. Деревья, усыхающие от грибных болезней (смоляной рак, корневая губка, голландская болезнь ильмовых), также вырубают и удаляют из насаждений. Вырубается кустарник (крушина, барбарис), если он является передатчиком инфекционных заболеваний.

Окорка и корчёвка пней производится с целью уничтожить вредных насекомых, поселяющихся под корой и в самих пнях, а также грибные болезни (опёнок, корневая губка, трутовики). С этой же целью необходимо собирать и уничтожать плодовые тела грибов—трутовиков.

Лечение ран и пломбирование дупел — важное и широко распространённое мероприятие в городских насаждениях, которое значительно удлиняет жизнь повреждённых деревьев. Рану сначала очищают от загнившей древесины, вырезая её до здорового слоя, затем дезинфицируют. Для дезинфекции применяют 3% раствор медного купороса, 3% раствор фтористого и кремнефтористого натрия, эмульсию генераторной сланцевой смолы, креозотовое или сланцевое масло. Очищенную и продизенфицированную рану сверху покрывают смолой или садовой замазкой. При лечении и пломбировании дупел предварительно проводится их очистка, формировка и дезинфекция. Формировкой полости дупла или раны преследуется цель не допустить затекания и скопления в них дождевой воды, создать условия для прочного удержания замазки и последующего зарастания раны.

Если дупло после лечения остается открытым, то внутренние стенки его необходимо покрыть водонепроницаемым составом, например сланцевой смолой или другими смолистыми составами. Чтобы не допустить застоя воды, выход делают в основании дупла, но лучше полностью заделывать полость. Хорошим материалом для пломбирования является смесь асфальта (1 часть) с песком или опилками (3—6 частей), эту смесь готовят путем разогрева асфальта и постепенного добавления к нему при перемешивании песка или опилок. После пломбировки вход в дупло покрывается жестью или другим материалом.

Физико—механический метод.

Физико—механический метод

Этот метод в основном дополняет другие, более эффективные мероприятия.

К механическим средствам борьбы относятся — сбор вредных насекомых, вылавливание их различными ловушками, устройство преград, окопка канавами очагов корневых гнилей.

Ручной сбор насекомых применяется в молодых и невысоких насаждениях. Вручную собирают ложногусениц сосновых пилильщиков, живущих группами, молодых гусениц кольчатого шелкопряда, листоедов и других насекомых. Кладки яиц непарного шелкопряда соскабливают скребками в ведро или на мешковину и уничтожают. Зимние гнёзда златогузки и боярышницы снимают с растений шестами с жёсткими щетками. Обрезают побеги с кладками кольчатого шелкопряда.

Ловчие деревья используются для привлечения стволовых вредителей, живущих под корой или в древесине. Выкладка ловчих деревьев производится до начала лёта жуков—короедов, усачей и златок, для того чтобы деревья немного подвяли. Место и срок выкладки ловчих деревьев зависят от вида вредителя. В качестве ловчих деревьев используют бурелом, ветровал и ослабленные деревья. После того как на ловчих деревьях появятся личинки, проводят окорку стволов, а затем сжигают кору вместе с личинками.

Липкие или клеевые кольца используют в качестве преград при передвижении бескрылых насекомых (самок бабочек зимней пяденицы, соснового подкорного клопа) или гусениц, взбирающихся по стволам в кроны деревьев (сосновый шелкопряд). Перед накладкой колец кору деревьев сглаживают. На деревья с тонкой корой накладывают кольца из плотной непромокаемой бумаги. Для клеевых колец применяют незастывающий гусеничный клей.

В борьбе с почвенными вредителями и возбудителями болезней в тепличных хозяйствах применяется термическая дезинфекция почвы с расчётом, чтобы температура почвы достигала +80°С.

Применяются светоловушки, и по количеству летящих на свет насекомых можно судить о начале массовой яйцекладки и правильно сигнализировать о начале борьбы с вредителями.

Биологический метод.

Биологический метод

Биологический метод в борьбе с вредителями растений основан на использовании естественных врагов вредителей — энтомофагов — паразитов и хищников, а также на применении микроорганизмов — возбудителей болезней вредителей.

В борьбе с болезнями растений начинают находить применение микроорганизмы — антагонисты возбудителей болезней и антибиотики.

Паразитами называются животные, живущие внутри или на теле других животных — хозяев. Разница между паразитами и хищниками заключается в том, что хищник убивает свою жертву сразу, а паразит, питаясь за счёт насекомого—хозяина, приводит его к гибели лишь с окончанием срока своего развития. Среди хищников известны многие виды жуков из семейства божьих коровок, поедающие тлей, червецов и щитовок, из семейства жужелиц, которые питаются гусеницами и личинками других насекомых. Хищные виды имеются среди полужёсткокрылых (клопы), сетчатокрылых, перепончатокрылых (муравьи) и других отрядов насекомых, а также среди клещей.

Наибольшее значение среди паразитических насекомых имеют представители отрядов перепончатокрылых и мух. Взрослые особи паразитов ведут свободный образ жизни, питаются нектаром и пыльцой цветов. Большинство паразитов из перепончатокрылых откладывает яйца внутрь тела насекомого—хозяина, за счёт которого они паразитируют. Разнообразны способы откладки яиц у паразитических мух, однако их личинки тоже проникают внутрь тела хозяина и там развиваются.

Эффективность энтомофагов в большой степени зависит от их специализации.

Например, афелинус, паразит кровяной яблонной тли, серьёзного вредителя яблони способен самостоятельно сдерживать размножение вредителя. Известно также много примеров подавления массового размножения таких вредителей, как непарный шелкопряд одновременно несколькими видами паразитов и хищников из группы олигофагов. Среди полифагов могут иметь большое значение для защиты лесопарковых насаждений хищные рыжие муравьи рода формика. Методы переселения муравейников в новые места, где их нет, разработаны.

В целом методы применения полезных насекомых в борьбе с вредителями городских и парковых насаждений остаются слабо разработанными, хотя имеется ряд примеров успешного использования энтомофагов. В южных районах страны против случайно завезенного в нашу страну австралийского желобчатого червеца, вредителя акации, цитрусовых и других древесных и кустарниковых растений, был применён хищный жук родолия, происходящий из Австралии. Очаги размножения вредителя были подавлены.

Для борьбы с мучнистыми червецами, повреждающими очень многие растения, был применён происходящий также из Австралии хищный жук криптолемус. Криптолемуса можно разводить в искусственных условиях, и он с успехом применяется для борьбы с мучнистыми червецами в открытом грунте и в теплицах.

В теплицах против паутинного клеща применяется хищный клещ фитосейулюс, первоначально завезённый из Алжира.

Из местных паразитических насекомых используются яйцееды рода трихограмма, которые могут развиваться в яйцах более чем 80 видов вредных насекомых, главным образом бабочек. Трихограмму размножают в специальных биолабораториях, используя яйца зерновой моли, легко разводимой в искусственных условиях. Взрослую трихограмму выпускают в природные условия в период яйцекладки вредных насекомых. Трихограмма, несомненно, может найти применение для борьбы со многими вредителями парковых и лесопарковых насаждений.

Для борьбы с кольчатым шелкопрядом, повреждающим многие лиственные породы, применяется яйцеед теленомус. При уходе за насаждениями кладки яиц кольчатого шелкопряда (в виде колец на ветках) обычно срезаются и уничтожаются. Выяснилось, что при этом одновременно с вредителем губится большое количество полезных яйцеедов, находящихся внутри яиц шелкопряда. Для сохранения теленомусов срезанные весной или осенью веточки с кладками яиц кольчатого шелкопряда помещают в мешки и содержат открыто, под навесом. Отрождающихся весной гусениц шелкопряда уничтожают. Когда начинается вылет теленомуса из заражённых яиц (во время лёта шелкопряда), его выпускают в насаждениях.

Успешное использование энтомофагов возможно только при создании благоприятных условий для их развития. Для многих энтомофагов необходим источник дополнительного питания — нектар и пыльца цветущих растений. В местах, где нектароносные растения обильны и их цветение продолжительно, энтомофагов скапливается много.

Необходимо иметь в виду, что ядохимикаты, применяемые против вредных насекомых, могут уничтожить и энтомофагов. Чтобы избежать этого, нужно знать биологию вредителей и их основных энтомофагов. Химические обработки против вредителей целесообразно проводить в безопасные для полезных насекомых сроки, например рано весной до распускания почек.

Рациональное сочетание различных методов борьбы даёт лучшие результаты.

Птицы уничтожающие вредных насекомых

Для насаждений в городах особенно полезными являются птицы, уничтожающие вредных насекомых. Для привлечения птиц в насаждениях, устраиваются искусственные гнездовья (скворечники, дуплянки), делается подкормка птиц в зимний период.

Уничтожают вредителей также летучие мыши, ежи, землеройки, и их нужно оберегать от истребления.

В последнее время достигнуты большие успехи в использовании микроорганизмов в борьбе против вредителей и болезней растений.

Применяемый против насекомых—вредителей отечественный биопрепарат энтобактерин безвреден для человека, пчёл и других полезных насекомых. Его можно применять в любую фазу вегетации растений, в том числе и в период цветения и уборки урожая, когда любые химические обработки растений недопустимы. Энтобактерин эффективен в борьбе с более чем 45 видами вредителей — яблонной, плодовой, черемуховой, бересклетовой, сиреневой и капустной молями, боярышницей, зимней пяденицей, ивовой волнянкой, сосновым, сибирским, кольчатым и непарным шелкопрядами, златогузкой, розанной и почковой листовертками. В организм насекомого препарат попадает вместе с кормом, поэтому применять его необходимо в период активного питания вредителей. Энтобактерин сильнее действует при температуре +17 — +30°С. Для опрыскивания на 10 л воды берут от 1 до 10 г энтобактерина, размешивают, образуя водную суспензию, расход препарата 2,5—5 кг на 1 га.

Дендробациллин, используемый для борьбы со многими вредителями, особенно из отряда чешуекрылых, боверин, вызывающий у многих вредных насекомых (бабочки, жуки, клопы) заболевание, называемое мюскардина.

Бактериальные препараты широко применяют в борьбе против мышей, крыс и полёвок. Для уничтожения крыс используются бактерии Исаченко, против мышей бактерии Мережковского. Применяются и другие бактериальные препараты. Культуры бактерий готовятся в специальных лабораториях и сохраняются в герметически закупоренных банках. На бактериальной культуре замешивают муку, добавляя зерно и овощи. Приготовленное тесто режут на кусочки и разбрасывают в местах обитания грызунов.

Лучшие результаты борьбы с вредными грызунами с помощью бактериальных препаратов получаются при использовании их в осенне—зимний период в местах скоплений грызунов.

Биологический метод борьбы с болезнями растений пока не нашел широкого практического применения.

Для уничтожения обитающих в почве фитопатогенных грибов рекомендуется использовать препараты триходермина. Триходермин, приготовляемый размножением культуры гриба на торфе, предварительно прогретом до +100°С в течении 20—30 минут.

Биологический метод борьбы с вредными для растений организмами (как вредителями, так и болезнями) обычно применяется как составная часть систем мероприятий, в которые входят химические, агротехнические и другие приёмы.

Химический метод.

Химический метод

Сущность химического метода защиты растений заключается в том, что в борьбе с вредителями и болезнями растений используются различные химические, большей частью ядовитые для этих организмов вещества.

Химические мероприятия по защите растений могут быть профилактическими и истребительными.

Профилактические применяются до появления на растениях вредных организмов или до перехода их во вредящую фазу, в таком случае представляется возможным предотвратить наносимый ими вред.

Истребительные меры направлены на уничтожение вредных организмов в более поздний период, поэтому вред может быть лишь частично ограничен.

Химическая защита растений отличается большой эффективностью, универсальностью, высокой производительностью при относительно небольших затратах труда.

В практике химической защиты растений используются мощные тракторные и автомобильные опрыскиватели и опыливатели, аэрозольные генераторы, самолёты и вертолёты.

В борьбе с вредными организмами химические средства применяются различными способами — опрыскиванием, опыливанием, фумигацией, или газацией, аэрозолями, внутренней терапией растений, отравленными приманками, протравливанием.

Опрыскивание — нанесение ядохимикатов в жидком состоянии на обрабатываемые растения. Достоинства опрыскивания — сравнительно малый расход действующих веществ, малая зависимость от ветра, равномерное покрытие обрабатываемых поверхностей и хорошая прилипаемость. К недостаткам этого способа можно отнести некоторую сложность приготовления рабочих составов и в ряде случаев большой расход воды.

Опыливание — сущность этого способа защиты растений заключается в нанесении на обрабатываемые поверхности (растения, насекомые) ядохимикатов с помощью специальных аппаратов—опыливателей.

Опыливание, как и опрыскивание, применяется для борьбы со многими вредными организмами. Достоинством опыливания является его простота. При опыливании не готовят специальные составы, ядохимикаты из заводской тары засыпают в опыливатель и приступают к работе. Однако при опыливании расходуется сравнительно большее количество ядохимикатов, в большей мере сказывается отрицательное влияние ветра и воздушных токов. При опыливании ядохимикаты менее равномерно распределяются на обрабатываемых поверхностях и хуже на них удерживаются.

Аэрозоли — ядовитые вещества применяются в виде дымов или туманов. Для получения аэрозолей применяют специальные дымовые шашки и аэрозольные генераторы. Аэрозоли можно применять против вредителей зелёных насаждений, но чаще их используют для обеззараживания оранжерей и складов.

Фумигация — использование ядов в паро или газообразном состоянии. Фумиганты эффективны для борьбы со многими вредными организмами, особенно в тех случаях, когда последние находятся в малодоступных местах — в почве, щелях стен. Как правило, фумигация применяется лишь в ограниченных пространствах — складах, оранжереях, камерах, норах грызунов, т. е. местах, где не происходит быстрое рассеивание газообразных веществ.

Внутренняя терапия растений — введение в растение безвредных для него химических веществ, которые, распространяясь, делают растение ядовитым для вредителей и возбудителей заболеваний. Внутренняя терапия осуществляется предпосевным опудриванием семян, намачиванием их в растворах ядохимикатов, опрыскиванием растений и накладыванием на стволы деревьев поясов из ткани, пропитанной ядовитым раствором, а также совместно с подкормками.

Отравленные приманки применяются в борьбе с грызунами и вредными насекомыми. Их раскладывают или рассеивают в местах обитания вредителей. В состав приманки кроме яда включают наиболее излюбленные для данного вредителя кормовые и привлекающие вещества.

Предпосевная обработка семян и посадочного материала — применяется влажная, полусухая и сухая обработка (протравливание). Посадочный материал обильно поливают раствором протравителя или погружают в него. В настоящее время химическая промышленность выпускает комбинированные препараты, защищающие посевной и посадочный материал от болезней и вредителей.

Гранулированные препараты изготовляются в виде комочков—гранул размером 0,5—3 мм. Часто в состав гранул помимо ядохимиката входят и удобрения (суперфосфат). Гранулированные препараты применяются в борьбе со многими вредителями, особенно обитающими в почве.

Основные методы мониторинга болезней пшеницы. Часть 4

Интегрированная защита растений состоит из 4 блоков: мониторинг за вредными организмами, анализ информации, установочные и корректирующие мероприятия. При этом мониторинг должен обеспечивать регулярный сбор информации об абиотических элементах среды и популяциях вредных организмов (Гулий, Миняйло, 1989).

Продолжение. Начало читайте:

Для составления краткосрочного прогноза и своевременного проведения химической защиты посевов необходимо постоянно следить за распространением и динамикой развития болезней, особенно за ржавчиной, септориозом, пиренефорозом и другими. Для этого выбирают 2-3 типичных стационарных участка или поле и по основным фазам развития растений проводят наблюдения: в благоприятные для заражения растений и развития болезней погодные условия еженедельно или один раз за декаду. Общий мониторинг фитосанитарного состояния проводится в период массового распространения болезней, охватываются им посевы, размещенные по разным предшественникам, посеянные в разные сроки, сортовое разнообразие культур [рис. 39].

Глазомерную балловую оценку интенсивности развития болезней обычно проводят по следующей шкале:

0 балла – растения здоровые;

1 балл – слабое поражение органа или растения;

2 балла – умеренное поражение, сильно пораженных органов или растений нет;

3 балла – среднее поражение, у некоторых органов или растений – сильное;

4 балла – сильное поражение органов и гибель растений.

При равномерном распространении заболевания учет болезней можно проводить с любой стороны поле, отступив от края 25-50 м, заходя вглубь посева до 100-200 м, анализируется определенное количество растений или отбирают пробы стеблей или листьев по треугольнику или произвольно из 7-10 площадок, при неравномерном (очажном) – по диагонали поле.

bolezni pshen 118 30

Рисунок 39. Мониторинг болезней пшеницы в зависимости от фазы развития и химические мероприятия проводимые для защиты её посевов

При учете болезней устанавливают 2 показателя: распространение, или количество пораженных растений в посевах, интенсивность или степень развития.

Распространение болезней (Р) определяют по формуле:

Р = n × 100 / N,

где: N – общее количество растений в пробах;
n – количество больных растений.

Средневзвешенный процент распространения (Р0) болезни вычисляют по формуле:

bolezni pshen 119 30

где: ∑SP – сумма произведений площади полей на соответствующий процент распространения болезни;
S – обследованная площадь, га.

Интенсивность развития болезней (R) в процентах или баллах определяют по формуле:

bolezni pshen 120 30

где: ∑ab – сумма произведений пораженных растений на соответствующий им балл или процент поражения;
N – общее количество учетных растений в пробах;K – наивысший балл шкалы.

Для получения более точных результатов используются специальные шкалы, характеризующие интенсивность развития той или иной болезни. Ниже приводятся методы учета основных групп болезней пшеницы.

Мониторинг болезней с воздушно-капельной инфекцией
Виды ржавчины

Для своевременной обработки посевов фунгицидами с целью предотвращения больших потерь урожая зерна от ржавчины и других болезней с аэрогенной инфекцией нужно постоянно следить за их появлением и распространением. В районах, где возделывают озимую пшеницу и рожь, учет ржавчины проводят с осени при появлении 2-3 листьев. Весной после их отрастания (апрель-май) на 10 площадках поле анализируют не менее 100-200 растений (листьев) и определяют распространение ржавчины и степень ее развития. По основным фазам развития яровой пшеницы ведут регулярные учеты и устанавливают сроки заражения посевов, распространение видов ржавчины, септориоза и других. При обнаружении признаков болезни через каждые 25-50 шагов берут 5-10 проб по 10-15 растений или стеблей. В лаборатории проводят детальный анализ, учитывая количество больных растений, степень поражения листьев или стеблей отдельно для каждой болезни. Интенсивность или степень развития ржавчины определяют в процентах по шкалам: бурой – Русакова, желтой – по Маннерсу, стеблевой по видоизмененной Коббом-Петерсона [рис. 40 и 41] и результаты заносят в полевой журнал или компьютерную программу.

В зависимости от приуроченности возбудителей болезней к определенным органам в течение онтогенеза растений анализируются листья различного яруса, междоузлия стеблей и колос. Если учет проводится в период трубкования-колошения, то анализируются 2 листа нижнего и среднего яруса, в период налива зерна – верхние 2 листа, включая флаговый. Последний учет бурой и желтой ржавчины проводят в фазу молочно-восковой спелости, стеблевой – в период восковой или полной спелости зерна [табл. 90].

Наблюдения за урединиоспорами ржавчины в приземном слое воздуха, атмосфере и осадках. Для определения сроков заражения растений видами ржавчины нужно вести постоянный мониторинг за содержанием их спор в воздухе и выпадаемых осадках. Наиболее аспространенным и доступным методом анализа заноса спор воздушным потоком является улавливание их флюгерным приспособлением [рис. 42] или спороловушками типа ПЛС-71 и ПЛС-71М. Оно проводится в период возможного развития ржавчины на пшенице: от фазы кущения до начала налива зерна. Приборы устанавливают среди посевов, предметные стекла, смазанные вазелином или касторовым маслом, следует менять через 2-3 дня. На наклейку записывают название или географические координаты наблюдательного пункта, число и месяц. Анализируются в лаборатории при слабом увеличении микроскопа (8 × 20 или 10 × 20). При отсутствии спор или небольшом их количестве просматривается вся поверхность предметного стекла, при наличии 1-2 спор – 2/3; 3-4 спор – 1/2, 5-10 – 1/3; более 10 спор – 1/5 его поверхности. Определяется вид ржавчины, число спор учитывается в 10 полях зрения микроскопа, как при определении заспоренности семян телиоспорами твердой головни.

bolezni pshen 121 30

Рисунок 40. Шкалы для оценки степени пораженности листьев пшеницы ржавчиной: (а) Русакова – бурой ржавчины, (б) Маннерса – желтой ржавчины

bolezni pshen 122 30

Рисунок 41. Модифицированная Коббом шкала Петерсона (Peterson et all. 1965) для оценки степени пораженности листовой и стеблевой ржавчиной

Таблица 89. Основные органы для учета болезней пшеницы с воздушно-капельной инфекцией

bolezni pshen 123 30

Для получения данных о наличии спор ржавчины, оседающих с осадками, проводят анализ дождевой воды. Для этой цели применяют прибор, состоящий из воронки диаметром от 15 до 24 см, со стеклянной трубкой длиной 20-30 см и диаметром 44 мм. В нижней её части устанавливают микрофильтр, который пропускает воду, но задерживает споры грибов [рис. 43]. После каждого дождя анализируется содержание спор ржавчины и других патогенов на фильтре путем центрифугирования и микроскопирования осадков.

Количество урединиоспор на 1 м 2 площади рассчитывают по формуле:

bolezni pshen 124 30

где: N – количество спор на 1 м 2 , шт;
n – количество спор на всей поверхности фильтра, шт;
S – площадь верхней горизонтальной части воронки, см 2 .

Если в период стеблевания пшеницы в течение суток в воздухе и осадках улавливаются две и более спор ржавчины на 1 см2 и условия для заражения растений благоприятные, то следует ожидать массовую вспышку болезней через 7-10 суток. Возникновение эпифитотий ржавчины возможно при обнаружении 10-15 спор на 10 см2 в период колошения пшеницы.

bolezni pshen 125 30

Рисунок 42. Флюгер для улавливания спор ржавчины в воздухе Рисунок 43. Прибор для учета спор ржавчины в дождевой воде

Со дня обнаружения урединиоспор гриба в приземном слое воздуха необходимо постоянно следить за относительной влажностью, среднесуточной температурой и появлением первых урединий гриба на листьях и стеблях. Важное значения для заражения растений имеет наличие росы. Заражение пшеницы бурой ржавчиной при средней температуре от 10 до 15°С происходит при продолжительности росяного периода более 5 часов, от 16 до 20°С сокращается до 4 часа.

Скорость развития возбудителей ржавчины зависит от температуры воздуха. Время, необходимое для одной генерации гриба, можно определить по формуле:

bolezni pshen 126 30

где: n – продолжительность генерации, сутки;
С – сумма эффективных температур для развития одной генерации, °С;
Т – среднесуточная температура воздуха, °С;
t – нижний температурный порог развития грибов.

Сумма эффективных температур, т.е. среднесуточных, превышающих нижний порог развития возбудителя бурой ржавчины, составляет 85°С, стеблевой – 125, желтой – 171, нижние пороги – 1,9, –2 и –0,7°С соответственно (методические указания, 1981; 1982). Пользуясь специальными номограммами или моделями можно прогнозировать интенсивность поражения посевов пшеницы видами ржавчины к молочно-восковой спелости зерна и возможные потери урожая зерна, определить необходимость химической защиты посевов от болезни и оптимальные сроки ее проведения.

Идентификация урединиоспор возбудителей ржавчины. У стеблевой ржавчины они имеют эллипсоидальную форму и четкий контур из-за окрашенной оболочки, бурой и желтой ржавчины -шаровидные или округло-овальные, примерно одинакового размера. Оболочка урединиоспор желтой ржавчины бесцветная, 1-2 мкм толщины, покрыта очень мелкими шипиками и 10-12 ростковыми порами; у бурой ржавчины 1-2 мкм толщины, густо покрыты маленькими шипиками, с 8-10 ростковыми порами.

Пятнистости листьев, мучнистая роса

Распространение и степень развития видов септориоза, желтой пятнистости или пиренефороза учитывают одновременно с ржавчиной. Для определения степени пораженности листьев можно использовать унифицированную шкалу Джеймса показателями: 1, 5, 10, 25, 50 и 100% [рис. 44а], колосьев – 5, 10, 25 и 50% [рис. 44б].

В регионах, где возделывают озимую пшеницу, наблюдения за мучнистой росой проводят осенью, продолжают весной следующего года, на яровой пшенице – от стеблевания до колошения. Степень пораженности листьев и других органов определяют по видоизмененной шкале Э.Э. Гешеле [рис. 45].

Виды головни, корневые гнили и другие болезни

Виды головни учитывают в период восковой или полной спелости зерна при апробации посевов. Для этого по диагонали поля через равные расстояния (50-100 метров) проверяют на корню или отбирают для детального анализа 1000 стеблей (по 25-50 с каждой площадки), пыльную легко определить во время цветения пшеницы. При анализе апробационного снопа учитывают все виды головни.

bolezni pshen 127 30

Рисунок 44. Шкалы для оценки пораженности листьев (а) и колоса (б) пшеницы грибными пятнистостями

bolezni pshen 128 30

Рисунок 45. Шкалы СИММИТ для оценки реакции и степени пораженности пшеницы видами ржавчины

Корневые гнили. Учет пораженности пшеницы болезнью проводят в фазу 2-3 листьев и перед уборкой урожая: через каждые 25-50 метров берут 10 проб, вырывая с корнем 10-20 растений с каждой площадки. В лаборатории их анализируют, пораженность всходов определяют в баллах по шкале ВИЗР:

0 балла – признаки болезни отсутствуют;
0,1 балла –единичные штрихи на колеоптиле;
1 балл – слабое побурение колеоптиле;
2 балла – умеренное побурение колеоптиле;
3 балла – сильное побурение, проникающее под колеоптиле;
4 балла –погибший проросток.

В фазу восковой или полной спелости зерна проводят второй учет, пробы отбирают аналогично, как в фазу всходов, или можно использовать апробационные снопы. В лаборатории основание корня очищается от листьев, определяется степень развития болезни по 4-х балльной шкале [рис. 46].

0 балла – здоровые растения;
0-1 балл – у основания стебля или у его подземной части бурые штрихи или полосы, занимают до 1/5 части пораженного органа;
2 балла – коричневые полосы или пятна, охватывающие от 25 до 50% поверхности пораженного органа;
3 балла –сильное побурение первого стеблевого и подземного междоузлия;
3-4 балла – отсутствие продуктивных стеблей при наличии симптомов по баллу 3.

3-4 – При отборе проб растений на корневую гниль в 10 точках берут почву весом 1-2 кг, инфицированность её возбудителем болезни определяют по методике Ледингама и Чина (1955). Просеивают её через сито диаметром 1 мм, взвешивают 10 г и помещают в пробирку 20×200 мм, приливают 5 мл веретенного или другого минерального масла, 30 мл водопроводной воды. Закрытую резиновой пробкой пробирку помещают в горизонтальном положении на ротатор и взбалтывают с постоянной частотой в течение 10-15 мин. После отстаивания пробирки в течение 1-1,5 ч, капли эмульсии объемом 0,01 мм просматривают на предметном стекле под бинокуляром или микроскопом при увеличении 40-80 × в 10-кратной повторности. Соответствующим пересчетом определяют количество конидий в 1 г почвы.

bolezni pshen 129 30

Рисунок 46. Шкала для оценки степени пораженности нижнего междоузлия пшеницы корневой гнилью

Вирусные и бактериальные болезни. В период колошения – молочной спелости зерна по диагонали поля на 10 площадках подсчитывают общее количество растений на 1 погонном метре и пораженных вирусными болезнями. Степень их проявления определяют по шкале Г.М. Развязкиной:

0 балла – здоровые растения;
1 балл – слабое поражение, листья с симптомами мозаики;
2 балла – среднее поражение, на листьях признаки мозаики;
3 балла – сильное поражение, листья ярко мозаичные, растения карликовые;
4 балла – погибшие растения.

Распространению бактериальных болезней пшеницы определяют при мониторинге листовой ржавчины и септориоза. Для оценки степени их развития на листьях и колосковых пленках можно использовать шкалы, рекомендованные для учета пятнистостей.

Методы фитоэкспертизы семян, экономические пороги их зараженности

Как известно, семена являются источником и участвуют в передаче инфекций многих болезней растений. Основными патогенами пшеницы, передающимися семенами, являются возбудители пыльной, твердой и карликовой головни, септориоза, гельминтоспориозной (Bipolaris sorokiniana) и фузариозной (виды Fusarium) корневых гнилей и бактериоза. Кроме того, в период формирования, уборки и хранения семена заселяются многочисленными эпифитными и сапрофитными грибами, в т.ч.: Alternaria, Cladosporium Trichotecium и др., а также плесневыми – виды Penicillium, Aspergillus, Mucor. Последние интенсивно развиваются при высокой влажности семян (15-16%) и снижают полевую их всхожесть. Возбудители «черного зародыша» пшеницы грибы A. tenuies и A. alternatа. Первый вид существенно не влияет на посевные качества семян и технологические свойства муки в связи с его локализацией в плодовой оболочке, а второй проникает глубже, поражая зародыш и снижает всхожесть.

В связи с изложенным необходимо определение зараженности семян инфекционными зачатками возбудителей болезней. Они присутствуют в виде примесей к семенам: телиоспор головни, конидий грибов, клеток и спор бактерий. Наиболее распространенными методами фитоэкспертизы семян являются визуальный, центрифугирование, биологический, бактериологический и анатомический анализы. В отдельных случаях применяют серологический и люминесцентный методы (Наумова, 1970; Кривченко с соавт., 1971).

Контрольный анализ семян пшеницы на грибную и бактериальную инфекцию проводят районные и областные инспекции Министерства сельского хозяйства, при необходимости лаборатории научно-исследовательских институтов и опытных станций.

Визуальный осмотр проводится одновременно с анализом чистоты семенного материала. При этом устанавливают наличие в зерне примесей головневых мешочков и рожков спорыньи. Семена рассыпают на стекло тонким слоем и делят линейкой на 4 треугольника, из каждого отбирают по 100 зерен и по шкале А.Г. Тороповой определяют степень пораженности их «черным зародышем»:

0 балла – здоровые семена;
0,5 балла –следы окрашивания зародыша размером с точку;
1 балла – потемнение зародыша и окружающей ткани;
2 балла – потемнение охватывает за пределами зародыша до ½ поверхности зерна;
3 балла – то же более ½ поверхности зерна.

bolezni pshen 130 30

Рисунок 47. Схема фитоэкспертизы семян пшеницы на зараженность грибной и бактериальной инфекцией

Для анализа зараженности семян комплексом патогенов проводятся дополнительные анализы методами: на заспоренность твердой головней – центрифугирование, пыльной головней – гистологический, инфицированность септориозом и гельминтоспориозом – биологическим.

Путем обмывки и центрифугирование устанавливают заспоренность семян пшеницы телиоспорами наружных видов головни, а также конидиями грибов Helminthosporium, Fusarium, Alternaria, Septoria. Для этой цели из среднего образца отбирают 2 пробы по 100 зерен, их помещают в чистые пробирки, заливают 10 мл воды и взбалтывают. После этого воду сливают в специальные пробирки и центрифугируют в течение 5 минут при оборотах 1 000-1 500. Из пробирки сливают воду, осадок взмучивают, наносят каплю его на предметное стекло и просматривают под микроскопом в 10 поле зрения. Данные суммируют и определяют среднее количество спор головни для каждой пробы по формуле:

bolezni pshen 131 30

где: Х – число спор на 1 зерно;
А – среднее число спор на 1 поле зрения микроскопа;
К – постоянный коэффициент: произведение числа полей микроскопа, размещающихся на покровном стекле, умноженное на число капель в 0,5 мл.

Площадь поля зрения микроскопа определяют по формуле:

bolezni pshen 132 30

где: π – постоянное число, равное 3,14;
R – диаметр поле зрения микроскопа.

Диаметр поля зрения микроскопа измеряют посредством объективного микрометра при определенном увеличении, затем подсчитывают число делений в одном, которое умножают на величину деления.

Биологический метод. Из исходного образца семя отбирают по 50 зерен и анализируют их во влажной камере. Для этого на стерильное дно чашки Петри кладут 2-3 слоя фильтровальной бумаги или кружочки марли, увлажняют их стерильной водой. Для выявления внутренней инфекции семена предварительно дезинфицируют в 0,5% растворе перманганата калия (KMnO4) в течение 5 минут или 0,1% растворе формалина, затем промывают стерильной водой. Чашки Петри с высеянными семенами инкубируют в термостате при 20-25°С течение 5-7 суток. Затем их анализируют визуально или при слабом увеличении микроскопа.

bolezni pshen 133 30

Рисунок 48. Фитоэкспертиза семян пшеницы в стерильном песке (а) и на фильтровальной бумаге (б) для определения зараженности грибной инфекцией

Для анализа зараженности семян пшеницы гельминтоспориозной, альтернариозной и фузариозной инфекциями проращивают по 20-25 зерен в 4-5 – кратной повторности при температуре 25°С в чашках Петри на увлажненном песке или фильтровальной бумаге. На 7-е сутки просматривают их визуально, при наличии спороношения грибов при слабом увеличении микроскопа по морфологии конидии определяют видовой их состав.

Возбудители многих грибных и бактериальных болезней хорошо растут на искусственных питательных средах. Поэтому, для определения инфицированности семян и грибной или бактериальной инфекцией, идентификации возбудителей наряду с влажной камерой могут быть использованы синтетическая среда Чапека и картофельный агар.

bolezni pshen 134 30

Рисунок 49. Проращивание семян на бумажных рулонах для установления пораженности их грибной и бактериальной инфекцией

bolezni pshen 135 30

Рисунок 50. Колонии грибов Bipolaris sorokiniana (а), A. tenuies (б), Fusarium spp (в) на искусственной питательной среде

Гистологический метод применяется для определения зараженности семян пшеницы пыльной головней. Кипятят их в колбе в 3%-ном растворе КОН или NaOH (из расчета 100-150 мл раствора на (100-120 зерен), на ситах размером 5, 3 и 1 мм зародыши отделяют от эндосперма и тщательно промывают водопроводной водой. В течение 2-4 минут окрашивают их в 1%-ном растворе анилинового синего, приготовленного в 40-45% уксусной кислоте, затем зародыши промывают в молочной кислоте для удаления лишней краски. В этом растворе их можно оставить на 2-3 дня (Кривченко, 1985).

Серологический метод применяется для диагностики бактериальных болезней пшеницы. Капельный метод, разработанный М.С. Дуниным и Н.Н. Поповой, позволяет идентифицировать возбудителей черного и базального бактериоза пшеницы. Для этого на предметном стекле смешивают специальную сыворотку с чистой культурой бактерий. При положительной реакции выпадает осадок, заметный невооруженным глазом.

Люминесцентный анализ. Семена пшеницы раскладывают в один ряд на черной бумаге, затем их на расстоянии от 15 до 30 см помещают под ртутно-кварцевую лампу. При этом здоровые семена дают сине-голубую или сине-фиолетовую флуоресценцию, а зараженные пыльной головней – не флуоресцируют, имеют тусклый вид. При поражении семян грибами из родов гельминтоспориум, фузариум и патогенными бактериями наблюдается аналогичная реакция.

На основе анализа результатов многолетних экспериментальных исследований и обобщения литературных данных разработаны предельно допустимые показатели пораженности колосьев головней, инфицированности семян и зараженности почвы возбудителем коревой гнили [табл. 91].

При зараженности семян выше указанных показателей рекомендуется обязательное их протравливание. Минимальные индексы инфицированности берутся при возделывании восприимчивых сортов или неблагоприятной фитосанитарной ситуации, а максимальные – для сравнительно устойчивых сортов и при благоприятных для роста и развития растений погодных условий.

Таблица 91. Критические параметры инфицированности семян и почвы возбудителями болезней

https://semku.ru/article/metody-i-sredstva-borby-s-vreditelyami-i-boleznyami-rasteniy
https://agrovesti.net/lib/tech/growing-cereals/osnovnye-metody-monitoringa-boleznej-pshenitsy-chast-4.html

Оставить комментарий

Ваш адрес email не будет опубликован. Обязательные поля помечены *

X